Département des Sciences et technologies

2025-2026

Avenue Victor Maistriau 8a
7000 Mons

Fiche ects de l'unité d'enseignement #341 intitulée :

Biologie moléculaire de l'ADN

Bachelier en Biotechnique / Bloc 2

Informations

Responsable d'UE : Vincent BRANDERS

Bloc : BIO2

Période : 2e quadrimestre

Durée : 40 h

Crédits : 3 ects

UE Prérequises : aucune

UE Corequises : aucune

Activités d'apprentissage (AA)

Connaissances et compétences préalables

Connaissances de base sur l'ADN et l'ARN.

Contribution aux objectifs du référentiel de compétences de l'ARES

Acquis d'apprentissage spécifiques

  1. Connaissance / Compréhension
    • Définir l'organisation générale des génomes procaryotes et eucaryotes, en distinguant les régions codantes, non codantes et les éléments répétés.
    • Expliquer les principes des méthodes d'extraction, purification et quantification des acides nucléiques, en identifiant les étapes clés et leurs finalités.
    • Décrire en détail les principes, applications et différences entre les principales techniques de PCR (classiques, qPCR, multiplex, RT-PCR, etc.) et de séquençage (Sanger, NGS, 3e génération).
    • Décrire les principaux mécanismes et structures impliqués dans la régulation et la stabilité du génome (pseudogènes, télomères, centromères, éléments transposables).
  2. Application
    • Appliquer un protocole standardisé de purification et d'amplification d'acides nucléiques en respectant les bonnes pratiques de laboratoire.
    • Réaliser une électrophorèse sur gel et interpréter les profils obtenus (qualité, taille, quantité approximative des acides nucléiques).
    • Mettre en œuvre des techniques de quantification (spectroscopie UV/Vis, Nanodrop, Qubit) et en expliquer les différences d'utilisation.
  3. Analyse
    • Comparer les avantages et limites des différentes variantes de PCR et des approches de séquençage (Sanger, NGS, 3e génération).
    • Interpréter des résultats expérimentaux simples issus d'une qPCR ou d'un séquençage (ex. : amplification relative, couverture, type de reads).
    • Identifier les sources possibles d'erreur ou de biais lors des étapes de purification, amplification ou séquençage.
  4. Évaluation
    • Évaluer la pertinence du choix d'une technique (ex. PCR vs qPCR, Sanger vs NGS) en fonction d'une problématique expérimentale donnée.
    • Critiquer la qualité et la fiabilité de résultats expérimentaux en fonction de la méthode utilisée et des paramètres de contrôle de qualité.
  5. Création / Synthèse
    • Proposer une stratégie expérimentale simple intégrant extraction, amplification et analyse de l'ADN/ARN adaptée à une situation de laboratoire courante (ex. détection d'un gène, identification d'un polymorphisme).

Contenu des AA

Analyse et séquence du génome

  1. Extraction et purification des acides nucléiques
    • Principes de la lyse cellulaire
    • Méthodes de purification : filtration, centrifugation, échange d’ions, précipitation, billes magnétiques, élution
    • Utilisation de kits commerciaux
    • Contrôle qualité et quantification :
      • Électrophorèse sur gel d’agarose
      • Spectroscopie UV/Vis (Nanodrop, Qubit, Bioanalyzer)
  2. Organisation et régulation des génomes
    • Organisation des génomes procaryotes et eucaryotes
    • Régions codantes et non codantes
    • Éléments génomiques particuliers : pseudogènes, rétrogènes, télomères, centromères
    • ADN extrachromosomique (plasmides, mitochondries, chloroplastes)
    • Taille et complexité des génomes
    • Éléments transposables et impact sur l’évolution des génomes
  3. Amplification des acides nucléiques
    • PCR conventionnelle : principes et mise en œuvre
    • Variantes : qPCR (quantification relative et absolue, courbe de fusion, discrimination allélique), RT-PCR, RT-qPCR, PCR multiplex
    • Applications particulières : digital PCR, nested PCR, PCR en émulsion, etc.
    • Analyse et interprétation des résultats d’amplification
  4. Séquençage et types de données
    • Séquençage Sanger
    • NGS :
      • principes
      • préparation de librairies
      • plateformes (Illumina, IonTorrent, pyroséquençage)
    • Types de données :
      • single-end, paired-end, mate-pair
    • Séquençage 3e génération : PacBio, Nanopore
    • Applications : séquençage ciblé, WGS, etc.
    • Assemblage et mapping
  5. Techniques complémentaires en génomique
    • DGGE
    • Blotting : Northern, Southern
    • ChIP
    • Microarrays et RNAseq

Applications de l'analyse et du séquençage d'un génome

Purification de l'ADN, amplification de l'ADN, techniques de séquencage de l'ADN, NGS, ...

Répartition des heures

Analyse et séquence du génome : 28 h de théorie

Applications de l'analyse et du séquençage d'un génome : 12 h d'exercices/Labos

Méthodes d'enseignement

Analyse et séquence du génome : cours magistral

Applications de l'analyse et du séquençage d'un génome : travaux de groupes, approche par projets, approche interactive, approche par situation problème

Langues d'enseignement

Analyse et séquence du génome : français, anglais

Applications de l'analyse et du séquençage d'un génome : français, anglais

Supports

Analyse et séquence du génome : copies de présentations

Applications de l'analyse et du séquençage d'un génome : copies de présentations, protocoles de laboratoires

Ressources bibliographiques

Analyse et séquence du génome

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Applications de l'analyse et du séquençage d'un génome

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Évaluation et pondération

Méthode d'évaluation : épreuve intégrée

Langues d'évaluation : français

Modalités d'évaluation :

La note finale est définie comme suit :

  • 75% pour Analyse et séquence du génome
  • 25% pour Applications de l'analyse et du séquençage d'un génome
    • La présence au laboratoire est obligatoire. Tout absence injustifiée sera sanctionnée d'une Absence à l'UE.
    • La partie pratique est non remédiable en seconde session
    • L'évaluation prendra compte des rapports de laboratoire, de l'implication des étudiants dans les activités et du travail accompli en laboratoire. Les détails spécifiques seront fournis sur Moodle.